Nat Cell Biol：单细胞新RNA测序在单次转录爆发层面上揭示了转录原理

实时成像实验和单细胞RNA测序（scRNA-seq）提供了转录爆发的直接证据【2,3】。然而，现有方法在推断转录动力学参数时存在局限性【4】，尤其是难以区分合成率和转录关停率（synthesis and closing rates）。合成率决定了每次转录爆发期间产生的RNA分子数量，即爆发的规模（burst size）；而转录关停率影响的是转录的静止期持续时间，即爆发的频率。这需要进一步优化单细胞层面的新RNA测序技术，从而更精确地解析转录爆发现象。

研究团队开发了NASC-seq2，这是一种改进的新RNA测序方法。该方法通过4-硫代尿苷（4sU）标记新合成的RNA【5】，并结合计算分析来区分新RNA和已有RNA。在实验中，研究者对10,000个原代小鼠成纤维细胞进行了单细胞新RNA测序，以推断转录爆发的动力学参数。NASC-seq2方法显著提高了检测敏感性和细胞处理通量，使得在每个细胞中检测到的基因数量大幅增加。

图1：a. 随着测序读取数增加，每个K562细胞检测到的基因数量变化。b. 针对F1原代成纤维细胞的大规模NASC-seq2实验示意图（Credit:Nature Cell Biology）

然后，研究人员对标记的新RNA分子进行定量分析，以推断出每个基因在特定时间内的RNA合成和转录停止的频率。结果表明，合成率（ksyn）是决定每次转录爆发期间产生的RNA分子数量的关键因素，即爆发的规模，而关停率（koff）则相对恒定。这一发现揭示了不同基因在表达过程中如何通过调整合成率来控制转录爆发的大小。

为了进一步探讨基因之间的转录爆发是否存在协同作用，研究者对全基因组范围内的基因进行了分析。他们利用NASC-seq2生成的高分辨率新RNA数据，观察基因对在同一细胞中是否同时发生转录爆发。研究结果显示，大多数基因的转录爆发是独立进行的，只有少数基因对，特别是那些位于基因组近端的同源基因对，表现出轻微的协同爆发现象。

图2：基因组区域中两个相邻基因：如果所有等位基因和基因都是独立转录的，在四个细胞中获得的新RNA的示意图（左），如果相邻基因从同一个等位基因协同爆发，在四个细胞中获得的新RNA的示意图（右）（Credit:Nature Cell Biology）

研究表明，哺乳动物基因的转录主要以爆发的形式进行，大多数基因以独立的方式发生爆发，而协同爆发较为少见。通过改进的单细胞新RNA测序技术（NASC-seq2），研究深入揭示了转录爆发的动力学原理，发现了合成率在决定转录爆发规模中的关键作用。这些发现深化了我们对基因转录机制的理解，还为未来研究提供了新的方向：未来可以将NASC-seq2技术应用于不同的细胞类型或组织，深入探索哪些转录因子或调控元件参与了合成率的调节，探讨转录爆发的动力学特征如何影响基因功能的表达，以及进一步改进测序技术。

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