Nature Methods:蛋白质“变形金刚”设计指南——AI“脑补”自然进化,一键生成智能分子开关 |
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蛋白质世界的 混搭 与工程师的 无从下手
要理解这项研究的巧妙之处,我们首先来看下蛋白质的构造哲学。许多蛋白质并非一个完整的整体,而是由多个相对独立的结构和功能单元 结构域(domains) 像乐高积木一样拼接而成。在数亿年的进化长河中,大自然这位最伟大的工程师,最擅长的就是 混搭 这些结构域,创造出功能千变万化的新蛋白质。
其中一种极为强大的 混搭 策略,就是结构域插入(domain insertion)。这并非简单的将两块乐高积木首尾相连,而是将一个结构域(我们称之为 插入结构域 ,insert domain)完整地嵌入到另一个结构域( 亲本结构域 ,parent domain)的内部。这种 你中有我 的紧密耦合,使得两个结构域在结构和功能上产生了深度的相互依赖。一旦插入结构域的构象发生变化(例如,因为它结合了一个小分子或感受到光),这种变化就可能通过机械力传导给亲本结构域,从而像多米诺骨牌一样,开启或关闭亲本结构域的功能。
这正是设计变构蛋白开关的黄金策略。理论上,我们只要找到一个合适的感应结构域(如光敏结构域或药物结合结构域)和一个我们想控制的功能结构域(如一个酶或一个基因编辑器),然后将前者插入后者的某个关键位置,就能创造出一个光控或药控的分子开关。
但理想很丰满,现实很骨感。这个 关键位置 到底在哪?蛋白质的氨基酸链条长短不一,从几十到几千个氨基酸不等,可能的插入位点成千上万。大多数插入都会直接破坏亲本蛋白质的折叠和功能,导致其彻底失活。只有极少数的 幸运 位点,不仅能容纳一个外来的结构域,还能有效地将感应结构域的构象变化传递出去,实现变构调控。找到这些万里挑一的 变构热点 (allosteric hotspots),是蛋白质工程师们面临的核心难题。过往的研究表明,即便是那些暴露在蛋白质表面、看起来很灵活的环区(loops),也只有一小部分能容忍结构域插入。传统的方法因为对蛋白质动态构象的理解有限,预测效果不佳,最终还是得回到实验室进行繁琐的筛选。
从 进化漏洞 到 设计圣经 : ProDomino的诞生
面对这一困境,研究人员转换了思路:既然人工设计这么难,我们何不向大自然学习呢?
他们推测,在自然界中偶然发生的 结构域插入 事件,虽然可能像进化过程中的 Bug ,但这些成功存活下来的 Bug ,本身就是一份完美的 工程说明书 。它们用活生生的例子告诉我们:在何种蛋白质的何种位置,可以成功地进行结构域插入。
于是,一个宏大的计划诞生了:创建一个关于天然结构域插入事件的大规模数据库,然后用它来训练一个机器学习模型。研究人员首先从庞大的Interpro蛋白质数据库和CATH结构域分类数据库出发,通过复杂的计算流程,筛选出了174,872个独特的天然结构域插入案例。这个数据集横跨整个生命之树,涵盖了202个不同的插入结构域超家族和168个不同的亲本结构域类型。
分析这个数据集本身就带来了一些有趣的发现。比如,最 滥情 的亲本结构域是P-loop NTPase,它可以和13种不同的插入结构域 配对 ;而最 百搭 的插入结构域则是PDZ 结构域,它能被插入到11种不同的亲本中。更有趣的是,这些自然插入事件似乎是普遍现象,并未偏向于特定的蛋白质类型,这说明其背后的物理化学规律是普适的。
有了这份 设计圣经 ,下一步就是训练AI了。研究人员采用了当时最先进的蛋白质语言模型之一ESM-2。你可以将ESM-2理解为一个精通 蛋白质语言 的翻译大师,它能将一个蛋白质的氨基酸序列,转化为包含丰富结构和功能信息的数学表达 嵌入(embeddings)。这比传统的独热编码(one-hot encoding)提供了远为丰富的信息。
他们将这些高质量的嵌入向量,输入到一个相对简单的神经网络中,模型的任务是:对于蛋白质序列中的每一个氨基酸位置,预测它是否是一个 耐受插入 的位点。在训练过程中,研究人员还巧妙地使用了一种位置掩码(positional masking)策略,让模型在每次学习时,只关注一个已知的正确插入位点和一个随机选择的负样本位点。这种做法,既解决了数据中正负样本极度不平衡的问题,也迫使模型更专注于学习区分 好 与 坏 位点的细微差别。
经过这一系列精心设计,一个强大的蛋白质结构域插入位点预测器 ProDomino (Protein Domain Insertion Optimizer) 就此诞生。
牛刀小试:在已知地图上,AI能否找到宝藏?
一个新模型是骡子是马,得拉出来遛遛。研究人员首先选择了一个已经被 前人 详细研究过的蛋白质 细菌转录因子AraC 作为ProDomino的第一个考场。在之前的研究中,科学家们已经通过实验手段,地毯式地筛选了AraC上几乎所有的插入位点,绘制出了一张详尽的 插入耐受性地图 。
ProDomino能否在不看这张 地图 的情况下,独立地找到上面的 宝藏 ?
结果令人振奋。ProDomino对AraC序列的预测分数曲线,呈现出几个明显的峰值。其中最高的两个峰值,恰好对应了AraC上两个已被实验证明的、能够实现强大变构调控的位点:I113 和 S170。更严格的评估指标 受试者工作特征曲线下面积(AUROC) 给出了0.84的高分。这表明,ProDomino不仅能找到 可以 插入的位点,更有潜力直接定位到那些能实现功能开关的 黄金 位点。这场牛刀小试,有力地证明了ProDomino的预测能力。
光影魔术手:用AI点亮 开关 ,实现精准时空猎杀
在已知地图上找到宝藏固然可喜,但在未知世界里开疆拓土才是真正的挑战。研究人员决定将ProDomino应用于全新的蛋白质,目标是设计出光控的 分子开关 。
他们选择了两种常见的抗生素抗性酶:嘌呤霉素乙酰转移酶(PAC)和氯霉素乙酰转移酶(CAT)。这两种酶能让细胞分别抵抗嘌呤霉素和氯霉素的毒性。他们的目标是:通过插入一个光敏结构域AsLOV2(它在蓝光照射下会发生构象变化),让这两种抗性酶变成 光控 的 比如,黑暗中保持活性,蓝光下失活。
ProDomino迅速给出了预测。在PAC中,它指向了E83附近区域;在CAT中,它则锁定了K136位点。这两个位点都位于蛋白质表面的 - 连接环上。
研究人员按照 AI设计图 施工,将AsLOV2结构域插入到了预测的位点。实验结果堪称完美:
在表达光控PAC的人类细胞中,黑暗条件下细胞能抵抗嘌呤霉素的攻击而存活;一旦用蓝光照射,PAC失活,细胞在48小时内纷纷死亡。在表达光控CAT的大肠杆菌中,黑暗中培养的细菌能够正常生长,而在蓝光下培养的细菌则几乎完全停止生长,两者在培养7小时后的光密度(OD)值相差了近20倍。
最令人惊叹的是一个空间控制实验。研究人员将表达光控CAT的细菌均匀铺在培养基上,然后用一个刻有图案的光掩膜(photomask)从下方进行照射。结果,只有在被掩膜遮挡的黑暗区域,细菌才能生长,完美地 复刻 出了掩膜的图案。这生动地展示了AI设计的分子开关所能达到的精准时空控制能力。
为了更全面地评估ProDomino的可靠性,研究人员还测试了多个高分和低分预测位点。结果显示,模型预测的成功率高达78%。高分预测的位点大多能成功构建出有活性的融合蛋白,而低分预测的位点则大多导致蛋白质失活。这表明,ProDomino的预测分数,是指导实验设计的可靠指标。
终极试炼场:驯服 基因魔剪 CRISPR,从 光控 到 药控
如果说设计单结构域酶的开关是 困难 模式,那么改造像CRISPR-Cas这样由多个结构域组成的复杂分子机器,无疑是 地狱 模式。CRISPR系统是基因编辑领域的明星工具,如果能给它装上一个精准的开关,实现 指哪打哪 和 随时开关 ,将极大地提升其安全性,对基因治疗意义重大。
研究人员首先向最著名的SpCas9系统发起了挑战。此前,已有研究通过大规模的转座子筛选实验,绘制了Cas9的插入图谱。ProDomino的预测结果与该图谱有相当高的一致性 (AUROC为0.71),但同时也预测了几个实验未能发现的、具有高插入潜力的 新大陆 。
研究人员挑选了四个这样的 争议位点 ,将AsLOV2光敏结构域插入其中,并与一个转录激活结构域VPR相连,构建成光控的基因激活工具(dCas9-VPR-LOV2)。实验结果再次验证了AI的 远见 。这四个全新的光控Cas9变体,均表现出良好的插入耐受性,并且其中三个展现出强大的光响应性:在黑暗中能高效激活下游基因的表达,其活性是光照下的8倍到14倍之多。
如果说改造Cas9还只是锦上添花,那么对Cas12a系统的改造,则真正展现了ProDomino解决 从无到有 问题的强大能力。Cas12a是另一种重要的基因编辑工具,其单链结构使得设计可控开关的难度更大,此前鲜有成功案例。
ProDomino对MbCas12a(一种Cas12a的直系同源物)的预测图谱呈现出多个峰值,暗示其对结构域插入的耐受性可能更强。研究人员首先测试了多个高分和低分位点的插入耐受性,再次确认了ProDomino预测的可靠性。
随后,他们进入了最终的设计环节。这一次,他们不仅要实现 光控 ,还要挑战 药控 。
光控Cas12a:他们选择了活性最好的N1153位点,将AsLOV2插入其中。得到的Cas12a-LOV2杂合蛋白表现出显著的光依赖性,在光照下其基因编辑活性会降低到黑暗条件下的三分之一,成功实现了光控的基因编辑。
药控Cas12a:这是本次研究的华彩乐章。研究人员将光敏结构域AsLOV2,替换为人类糖皮质激素受体2的配体结合域 (GR2)。GR2在没有结合其配体 一种临床常用药物皮质醇(cortisol) 时,结构松散;结合皮质醇后,则会折叠成紧凑的构象。研究人员希望利用这种 药物诱导折叠 的特性,实现对Cas12a的 激活 控制。他们将GR2插入到K487和N1153这两个活性位点。
实验结果令人瞩目。尤其是N1153位点的Cas12a-GR2变体,展现出了近乎完美的开关特性。在没有人为添加皮质醇的情况下,它的基因编辑活性几乎为零,接近检测极限;而一旦加入皮质醇,它的活性便 一飞冲天 ,在多个内源基因靶点上,其编辑效率能够达到野生型Cas12a的50%至70%。这意味着,研究人员成功地创造出了一种高效、紧密且由临床药物控制的 安全锁 版基因剪刀。
从 大海捞针 到 按图索骥 :重塑蛋白质工程的游戏规则
ProDomino的成功,标志着蛋白质工程领域一个设计范式的转变。它将蛋白质开关的设计,从依赖直觉和大规模筛选的 手工作坊 模式,推向了由数据驱动和模型指导的 智能制造 时代。
这项研究的价值远不止于创造了几个新奇的分子工具。
速度与效率:研究人员在论文中提到,整个实验验证过程 从克隆所有候选蛋白到完成各种检测 仅用了约6个月时间。这与过去为了一个项目耗时数年才能成功的经历相比,是巨大的飞跃。
普适性与可及性:ProDomino的成功并非局限于某一类蛋白质,它在结构和功能迥异的多种蛋白质(转录因子、酶、基因编辑器)上都取得了成功,展示了其广泛的应用潜力。它使得设计定制化的生物传感器、可控的细胞疗法和前沿的科研工具,变得前所未有的高效和可预测。
思想的启迪:ProDomino的核心,是向自然学习。它证明了,蕴藏在海量生物数据中的进化信息,是解决复杂生物学设计问题的金矿。人工智能,正是我们挖掘这座金矿的强大工具。
未来,我们可以想象,将ProDomino与基于结构的预测工具相结合,或者与从头设计全新开关结构域的方法相结合,将进一步释放其潜力。蛋白质工程师们将不再是黑暗中摸索的探险家,而是手持AI绘制的精准地图,自信地走向下一个设计目标的领航员。
生命的设计语言,深奥而复杂。但现在,有了AI这位精通进化语法的 翻译 ,我们正以前所未有的速度,破译着这本天书,并开始书写属于我们自己的新篇章。
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